Przewodniki szybkiego startu
Skrócona instrukcja obsługi analizy rozmazu krwi AI (PDF)
Skrócona instrukcja obsługi diagnostyki dermatologicznej AI (PDF)
Przewodnik szybkiego startu dotyczący analizy liczby jaj w kale koni AI (PDF)
Skrócona instrukcja obsługi analizy kału AI (PDF)
Przewodnik szybkiego startu dotyczący analizy osadu moczu AI (PDF)
Przewodnik szybkiego startu dotyczący cytologii cyfrowej (PDF)
Przygotowanie preparatów mikroskopowych do analizy rozmazów krwi Vetscan Imagyst
Skanowanie preparatu mikroskopowego do analizy rozmazu krwi Vetscan Imagyst
Weryfikacja wyników analizy rozmazu krwi Vetscan Imagyst
Przegląd kategorii półilościowych czynników zakaźnych AI Dermatology (PDF)
Przewodnik po przygotowaniu próbek do badania uszu prawego i lewego AI Dermatology (PDF)
Przygotowanie preparatu do cytologii dermatologicznej Vetscan Imagyst
Skanowanie preparatu na potrzeby cytologii dermatologicznej Vetscan
Weryfikacja wyników cytologii dermatologicznej Vetscan Imagyst
Przygotowanie preparatów mikroskopowych do analizy AI Equine Fecal Egg Count (FEC)
Weryfikacja wyników analizy AI Equine Fecal Egg Count
Przygotowanie preparatów mikroskopowych do analizy kału wspomaganej przez AI
Umieszczanie szkiełka nakrywkowego na potrzeby analizy kału wspomaganej przez AI
Skanowanie preparatu mikroskopowego do analizy kału wspomaganej przez AI
Weryfikacja wyników analizy kału wspomaganej przez AI
Analiza osadu moczu AI w punkcie opieki (PDF)
Przewodnik po zasobach szpitalnych dotyczących osadu moczu AI (PDF)
Biała księga medyczna dotycząca osadu moczu AI (PDF)
Procedura rozcieńczania analizy osadu moczu AI (PDF)
Przygotowanie preparatu mikroskopowego do analizy AI Urine Sediment
Skanowanie preparatu na potrzeby analizy AI Urine Sediment
Weryfikacja wyników analizy AI Urine Sediment
Płyny
Jama ciała (osierdzie) (PDF)
Jama ciała (opłucna, otrzewnowa) (PDF)
Płyn mózgowo-rdzeniowy (PDF)
Maziówka/staw (PDF)
Mycie (PDF)
Dodawanie badania Vetscan Imagyst Cytologia cyfrowa
Przygotowanie preparatu mikroskopowego do cyfrowego badania cytologicznego
Wprowadzanie zamówień cytologii cyfrowej
Skanowanie preparatu na potrzeby cyfrowego badania cytologicznego
Karta miejsca płynu
Karta miejsca zmiany
Weryfikacja wyników cyfrowego badania cytologicznego
Przewodnik użytkownika
Przegląd Vetscan Imagyst
Dostosuj kolor
Panel Ocena
Widok karuzeli
Widok Galeria
Panel działań Widoku galerii
Funkcje wwidok galerii
Panel wyników widoku galerii
Dodawanie, edytowanie i usuwanie masek obszaru skanowania
Dodatkowa weryfikacja ekspercka
Maska obszaru skanowania
Przegląd skanera Grundium Ocus
Podręcznik rozwiązywania problemów ze skanerem Grundium
Rutynowe czyszczenie skanera (PDF)
Maski obszaru skanowania stosowane ze skanerami Grundium
Logowanie, wylogowywanie i bezpieczeństwo sesji
Adres e-mail (nazwa użytkownika)
Zmień hasło
Nie pamiętam e-maila (nazwa użytkownika)
Nie pamiętam hasła
Dodawanie tymczasowego okna pola widzenia (FOV) dla potrzeb analizy AI Urine Sediment
Dodawanie, edytowanie i usuwanie pomiarów
Edycja zrzutu obrazu
Galeria przykładów
Widok slajdów
Panel liczbowy widoku slajdów
Funkcje widoku slajdów
Narzędzie pomiarowe
Demonstracja analizy rozmazu krwi AI
Co robić, a czego nie robić w analizie rozmazu krwi AI
untitled article (pl)
Analiza rozmazu krwi AI z wykorzystaniem nowego barwnika błękitu metylenowego (NMB)
Lista kontrolna kału
Jak wykonać badanie kału
Krok 1: zbieranie kału
Krok 2 badania kału: przygotowanie próbki kału
Krok 3 badania kału: umieszczenie próbki na szkiełku
Krok 4 kału: nałóż szkiełko nakrywkowe na szkiełko
Krok 5 kału: rozpoczęcie testu
Demo Cytologii Cyfrowej
Jak wykonać rozmaz krwi
Instrukcja: szkiełko nakrywkowe i olejek immersyjny
Poradnik: co robić, a czego nie
Jak to zrobić: cytologia ucha
Jak to zrobić: cytologia kału
Jak wykonać biopsję cienkoigłową
Jak: rozmazywać linie
Jak postępować: zmiany skórne/skrobania
Jak: barwić szkiełko
Jak: osad moczu
Jak korzystać z aplikacji Imagist
- All Categories
-
-
- Przygotowanie preparatów mikroskopowych do analizy rozmazów krwi Vetscan Imagyst
Przygotowanie preparatów mikroskopowych do analizy rozmazów krwi Vetscan Imagyst
Updated
by Shannon Mitchell
Pobieranie próbki krwi
- Wybrać największą żyłę i dobrać odpowiednią igłę do pobrania krwi.
- Zastosować możliwie niewielką ilość alkoholu i odczekać aż odparuje przed nakłuciem żyły, ponieważ alkohol może wywołać hemolizę w próbce.
- Stosować możliwie niskie podciśnienie w strzykawce i nie pociągać za tłok zbyt szybko.
Przechowywanie próbek krwi
- Po pobraniu krwi od pacjenta należy ją przenieść do probówki zawierającej EDTA.
- W przypadku niestosowania systemu BD Vacutainer®, zdjąć igłę ze strzykawki i osłonę z probówki transportowej na krew.
- Napełnić probówkę do wskazanej przez producenta linii.
Oznaczanie preparatów mikroskopowych
- Oznaczyć szkiełka podstawowe ołówkiem, podając identyfikator pacjenta i datę.
Ważne: Należy unikać stosowania pisaków i długopisów, ponieważ zmywają się podczas barwienia.
Przygotowanie preparatu mikroskopowego
- Wymieszać krew z antykoagulantem EDTA.
- Za pomocą kapilary mikrohematokrytowej lub pipety precyzyjnej pobrać krew ze świeżo wymieszanej probówki i ostrożnie umieścić kroplę na opisanym szkiełku podstawowym. Należy uważać, aby nie dotknąć szkiełka podstawowego końcówką kapilary bądź pipety.
Ważne: Do przenoszenia krwi nie należy używać drewnianych patyczków, ponieważ płytki i krwinki białe mają tendencję do przylegania do nich.
Pozycjonowanie szkiełka rozprowadzającego
- Umieścić rozprowadzające szkiełko podstawowe pod kątem 30°–45° na opisanym szkiełku z preparatem tuż przed kroplą krwi.
Wykonanie rozmazu
- Przesunąć szkiełko rozprowadzające tak, by zetknęło się z kroplą krwi.
- Siły kapilarne rozciągną próbkę wzdłuż krawędzi szkiełka rozprowadzającego.
Ważne: Nie dopuścić, aby krew dotarła do bocznych krawędzi szkiełka.
Dokończenie rozmazu
- Zanim krew dotrze do bocznych krawędzi szkiełka, płynnym i stabilnym ruchem przesunąć szkiełko rozprowadzające wzdłuż szkiełka podstawowego z preparatem. Prowadząc szkiełko rozprowadzające, utrzymywać stały kąt i nie dociskać szkiełka. Dzięki temu powinno się uzyskać jednolity rozmaz krwi pokrywający około ½ do ⅔ powierzchni szkiełka podstawowego.
- Pozostawić preparat mikroskopowy do wyschnięcia na powietrzu, aby uniknąć artefaktów powstających podczas suszenia strumieniem powietrza.
Ważne: Nie utrwalać preparatu termicznie. - Po wykonaniu rozmazu należy dokonać wizualnej oceny preparatu. Rozmaz powinien przypominać odcisk kciuka, a jego końcowa krawędź powinna być postrzępiona.
Barwienie preparatu
- Stosując mieszaninę barwiącą metodą Romanowskiego (np. Diff-Quik™), należy ściśle przestrzegać instrukcji producenta dotyczących procesu barwienia:
- Utrwalacz
- Czerwony barwnik
- Niebieski barwnik
- Płukanie wodą
- Suszenie na powietrzu.
Barwniki należy wymieniać regularnie, zgodnie z zaleceniami producenta, lub gdy ich jakość ulegnie pogorszeniu.
Nakładanie szkiełka nakrywkowego
- Po wybarwieniu preparatu i wysuszeniu go na powietrzu, nanieść kroplę olejku immersyjnego na rozmaz.
- Następnie nałożyć szkiełko nakrywkowe o wymiarach 24 × 60 mm.
- Olejek immersyjny umożliwi przywarcie szkiełka nakrywkowego do preparatu.
- Preparat jest teraz gotowy do skanowania za pomocą Vetscan Imagyst.